正式测定前取 2-3个预期差异较大的样本做预测定

测定意义：

纤维素是由葡萄糖组成的大分子多糖，通常与半纤维素、果胶和木质素结合在一起，是植物细胞壁的主要结构成分。纤维素是一种重要的膳食纤维，是自然界中分布最广、含量最多的一种多糖。

测定原理：

纤维素为β－葡萄糖残基组成的多糖，在酸性条件下加热能分解成β－葡萄糖。β－葡萄糖在强酸作用下，可脱水生成β－糠醛类化合物。β－糠醛类化合物与蒽酮脱水缩合，生成糠醛衍生物。颜色的深浅可间接定量测定纤维素含量。

需自备的仪器和用品：

可见分光光度计、水浴锅、可调式移液器、1ml玻璃比色皿、80%乙醇、丙酮、浓硫酸(不允许快递)、研钵和蒸馏水。

试剂的组成和配制：

试剂一：液体 60ml × 1瓶，4℃保存。

试剂二：粉剂×1瓶，4℃避光保存。

试剂三：液体 6ml × 1支，4℃保存。

样品的前处理：

1、样品 80℃烘干至恒重^{【注 1】}，粉碎，过 40目筛。称取 0.01g样本，加入 1ml 80%乙醇，90℃水浴 20min^{【注 2】}，冷却至室温，8000g 25℃离心 10min，弃上清。沉淀中加入 1.5ml  80%乙醇和丙酮各清洗一遍(涡旋振荡 2min左右，8000g 25℃离心 10min，弃上清)，沉淀烘干后即为粗细胞壁。

2、在上述粗细胞壁中加入 1ml试剂一，充分混匀，90℃水浴 30min^{【注 2】}。取出冷却后 8000g25℃离心 10min，弃上清。沉淀中加入 1ml蒸馏水混匀，涡旋振荡 2min左右，8000g 25℃离心 10min，弃上清，沉淀用蒸馏水重复清洗 3次(加入 1ml蒸馏水混匀，涡旋振荡 2min左右，8000g 25℃离心 10min，弃上清)。沉淀中加入 1ml丙酮，混匀后 8000g 25℃离心 10min，弃上清，沉淀烘干待用。

3.在上述烘干的沉淀中加入 0.5ml蒸馏水，置于冰水浴中，缓慢加入 0.75ml浓硫酸，混匀，冰水浴中静置 30min。8000g 4℃离心 10min，取上清液，用蒸馏水稀释 20倍后待测^{【注 3】}。

注意事项：

【注 1】 80℃烘干的时间为 2小时，依据样本情况可延长烘干时间。

【注 2】 90℃加热过程中 EP管可能爆开，建议用胶带封口或使用带螺旋盖的防爆 EP管。

【注 3】部分样本中纤维素含量较低(淀粉含量较高)，如米粉、板栗、甘薯等，可不稀释或减小稀释倍数。

测定步骤：

1、分光光度计预热 30min以上，调节波长至 620nm，蒸馏水调零。

2、调节水浴锅至 95度。

3、工作液的配制：在试剂二中加入 4ml试剂三，充分溶解，如较难溶解，可加热搅拌；用不完的试剂 4℃保存一周；

4、加样表(在 EP管中反应)：

混匀，置 95度水浴中 10min(盖紧，以防止水分散失)，冷却至室温后，于 620nm处，分别读取空白管和测定管吸光值，ΔA=A测定管-A空白管。

注意：

1、空白管只要做一管。

2、由于浓硫酸具有强腐蚀性，请谨慎操作。

纤维素含量计算：

1、标准条件下测定的回归方程为 y = 7.875x - 0.0043；x为标准品浓度(mg/ml  )，y为吸光值。

2、按样本质量计算：

纤维素(mg/g干重)= [(ΔA＋0.0043)÷7.875×V₁]÷(W×V₁÷V₂)×20=3.17×(ΔA＋0.0043)÷W。

V₁：加入样本体积，0.3ml  ；V₂：加入提取液体积，1.25ml  ；W：样本干重， 0.01g；20：样本稀释倍数。

注意：最低检测限为 1mg/g 干重或 10μg/ mg prot